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细胞转染之PEI转染法：1.细胞分盘：通过胰酶消化收集细胞，用适当的完全培养基以1×105至4×105细胞/cm2的密度平铺细胞于35mm培养皿上（根据实验需要选择培养皿，使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的70－90％）。将细胞置于含5％CO2的37℃温箱中孵育8-24h，当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前2h换液（用1.5ml无血清培养基置换旧的培养基）。注：PEI转染法对细胞生长有克制作用，在换液前细胞几乎不生长，所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA混合物以35mm组织培养皿用240μl反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入质粒DNA（总量1-3μg为佳），混匀后加入等体积PEI工作液，充分混匀后室温静置20-30min，较后将这240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中，轻轻摇动平皿混匀后置于含5％CO2的37℃温箱孵育。当复合物接近细胞膜时，通过内吞作用形成内体进入细胞。珠海细胞高效转染试剂单价

细胞转染操作方法：转染，是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入，转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例；化学介导方法很多，如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术；生物介导方法，有较为原始的原生质体转染，和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法，应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术，是目前转染效率较高的方法，同时具有细胞毒性很低的优势。但是，细菌转染方法的准备程序复杂，常常对细胞类型有很强的选择性，在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法，则各有其特点唐山正规细胞高效转染试剂平均价格使用基质珠做为固相支持可以使贴壁细胞悬浮生长。

细胞转染为什么不能加血清：传统的转染试剂一般会增加细胞的通透性，这样会把血清中的成分带入细胞，造成细胞毒性。阳离子脂质体，转染的过程是带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。血清中含有大量的蛋白质，在转染过程中，带负电的蛋白质可能干扰阳离子脂质体对核酸的吸附，影响转染效率。同时，也会将血清中的蛋白带入细胞，引发细胞毒性，故不能有血清转染。这些转染试剂要求在转染前换无血清培养基，转染后4-6h在更换成有血清培养基，这其实是为了减轻转染造成的细胞毒性和转染效率的降低。

转染的注意事项：培养基中的物品物品，比如青霉素和链霉素，是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒，但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性，使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性，导致转染效率低。所以，在转染培养基中不能使用物品，甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样，在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染，不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素，因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。果观察到转染效率降低，可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。

细胞转染常用步骤：1.转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。②震荡后将试剂放在－20摄氏度保存，使用前还需震荡。2.选择合适的混合比例(1：1－1：2/脂质体体积：DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA，震荡后在加入合适体积的转染试剂，再次震荡。3.将混合液在室温放置10―15分钟。4.吸去培养板中的培养基，用PBS或者无血清培养基清洗一次。5.加入混合液，将细胞放回培养箱中培养一个小时。6.到时后，根据细胞种类决定是否移除混合液，之后加入完全培养基继续培养24－48小时~有血清时的转染 血清一度曾被认为会降低转染效率。武汉细胞高效转染试剂报价

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细胞电转染实验的几点建议：1.电场强度要合适合适的电场强度对于电转染实验非常重要，电场强度不能过高，过高会增加细胞的死亡率；也不能过低，过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的较佳场强值，实验前应测定所转染细胞系的较佳电场强度。2.细胞状态要好用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞（15代以内，传代后2d）。因为处于对数生长期的细胞分裂旺盛，表面结构致密比稳定期的细胞差，电转后，细胞膜的恢复能力强，而且处于有丝分裂期的细胞更容易接受外源DNA珠海细胞高效转染试剂单价